Бактерии группы кишечных палочек — короткие (длина 1—3 мкм, ширина 0,5—0,8 мкм) полиморфные подвижные и неподвижные грамотрицательные палочки, не образующие спор.
Колонии на плотной питательной среде
Бактерии хорошо растут на простых питательных средах: мясопептонном бульоне (МПБ), мясопептонном агаре (МПА). На МПБ дают обильный рост при значительном помутнении среды; осадок небольшой, сероватого цвета, легкоразбивающийся. Образуют пристеночное кольцо, плёнка на поверхности бульона обычно отсутствует. На МПА колонии прозрачные с серовато-голубым отливом, легко сливающиеся между собой. На среде Эндо образуют плоские красные колонии средней величины. Красные колонии могут быть с тёмным металлическим блеском () или без блеска (). Для лактозоотрицательных вариантов кишечной палочки () характерны бесцветные колонии.
Им свойственна широкая приспособительная изменчивость, в результате которой возникают разнообразные варианты, что усложняет их классификацию.
Большинство бактерий группы кишечных палочек (БГКП) не разжижают желатина, свертывают молоко, расщепляют пептоны с образованием аминов, аммиака, сероводорода, обладают высокой ферментативной активностью в отношении лактозы, глюкозы и других сахаров, а также спиртов. Не обладают оксидазной активностью. По способности расщеплять лактозу при температуре 37 °C БГКП делят на лактозоотрицательные и лактозоположительные кишечные палочки (ЛКП), которые формируются по международным стандартам. Из группы ЛКП выделяются фекальные кишечные палочки (ФКП), способные ферментировать лактозу при температуре 44,5 °C. К ним относится , не растущая на цитратной среде.
Бактерии группы кишечных палочек обезвреживаются обычными методами пастеризации (65—75 °C). При 60 °C кишечная палочка погибает через 15 мин. 1 % раствор фенола вызывает гибель микроба через 5—15 мин., сулема в разведении 1:1000 — через 2 мин., устойчивы к действию многих анилиновых красителей.
Устойчивость бактерий к антибиотикам обусловлена: а) нарушением процесса поступления антибиотика в клетку или ускоренным его выведением из клетки (например, в результате изменения проницаемости мембраны), б) специфическими изменениями структур, являющихся мишенью действия антибиотика (изменением сайта связывания в рибосоме или молекуле ДНК), в) генетически запрограммированными ферментативными реакциями, обеспечивающими устойчивость к антибиотику.
Санитарно-показательное значение отдельных родов бактерий группы кишечных палочек неодинаково. Обнаружение бактерий рода в пищевых продуктах, воде, почве, на оборудовании свидетельствует о свежем фекальном загрязнении, что имеет большое санитарное и эпидемиологическое значение.
Считают, что бактерии родов и являются показателями более давнего (несколько недель) фекального загрязнения и поэтому они имеют меньшее санитарно-показательное значение по сравнению с бактериями рода .
При длительном применении антибиотиков в кишечнике человека также обнаруживают различные варианты кишечной палочки. Особый интерес представляют лактозоотрицателъные варианты кишечной палочки. Это изменённые эшерихии, утратившие способность сбраживать лактозу. Они выделяются при кишечных инфекциях человека (брюшном тифе, дизентерии и др.) в период выздоровления.
Наибольшее санитарно-показательное значение имеют кишечные палочки, не растущие на среде Козера (цитратная среда) и ферментирующие углеводы при 43—45°С (). Они являются показателем свежего фекального загрязнения.
В связи с неодинаковым санитарно-показательным значением отдельных родов бактерий группы кишечных палочек их дифференцируют на основании признаков, образующих комплекс ТИМАЦ.
Группа кишечных палочек активно используется в промышленности для производства сырья в крупных объёмах.
Правила подготовки к исследованию «Выявление условно-патогенных микроорганизмов методом ПЦР»
Взятие материала желательно проводить до диагностических и лечебных манипуляций в предполагаемом месте локализации возбудителя.
Взятие биологического материала рекомендуется проводить до начала применения лекарственных препаратов (антибактериальных, противовирусных, противопаразитарных). При проведении исследований в целях контроля лечения целесообразно проводить взятие проб на ПЦР-тесты не ранее, чем через 10-14 дней после окончания применения соответствующих препаратов локального действия и не ранее, чем через один месяц после проведения системной терапии.
При подготовке пациента к процедуре следует учесть:
При соскобе эпителиальных клеток ротоглотки:
При соскобе эпителиальных клеток урогенитального тракта
Обследование женщин целесообразно проводить в первую половину менструального цикла, не ранее 5-го дня. Допустимо обследование во второй половине цикла, не позднее, чем за 5 дней до предполагаемого начала менструации. При наличии выраженных симптомов воспаления, взятие материала проводится в день обращения. Накануне и в день обследования пациентке не рекомендуется выполнять спринцевание влагалища. Не рекомендуется взятие биоматериала на фоне проведения антибактериальной терапии (общей/местной) и во время месячных, ранее 24-48 часов после полового контакта, интравагинального УЗИ и кольпоскопии.
И для мужчин, и для женщин, рекомендуется брать материал не ранее, чем через 14 дней после применения антибактериальных препаратов и местных антисептиков, и не ранее, чем через один месяц после применения антибиотиков перорально. Если для исследования берут соскоб из уретры, сбор материала проводят до или не ранее 2-3 часов после мочеиспускания.
При исследовании мочи
Следует собирать первую утреннюю порцию мочи в количестве 20-30 мл в стерильный флакон. Не рекомендуется взятие биоматериала на фоне проведения антибактериальной терапии.
Желательно соблюдать все описанные условия, если лечащим врачом не рекомендовано иное.
В абзаце 4 пункта 157 СанПиН 2.1.3684-21 упоминаются живые вакцины как представители медотходов класса В. Это объяснимо, ведь препараты содержат опасные микроорганизмы. Но данный пункт породил недопонимание.
В СанПиН живые вакцины отнесены к классу В, с другими все не так однозначно
У специалистов в области микробиологии возник вопрос: к каким классам относятся другие вакцины, ведь живые – это только один вид. Сегодня на него отвечают специалисты «МЕДСЕРВИС 24».
Какие бывают вакцины
Вакцина – это препарат, цель которого сформировать у пациента приобретенный иммунитет к отдельно взятому антигену. Прививки позволяют защититься от заболеваний до того, как человек вступит в контакт с возбудителями.
В микробиологии выделяют следующие виды вакцин:
Как видим, живые вакцины – это лишь один вид. Остальные не содержат опасную микробиоту, поэтому по аналогии к медотходам класса В их отнести нельзя.
Почему живые вакцины – это класс В
К медотходам класса В мы традиционно относим предметы, вступавшие в контакт с микроорганизмами 1–2 групп патогенности. При попадании в окружающую среду они могут вызвать страшную эпидемию или эпизоотию.
По старым санитарным правилам (СанПиН 2.1.7.2790-10) живые вакцины относились к медицинским отходам класса Б. В актуальном документе их перевели в класс В.
Прививки с живыми вакцинами делают далеко не от самых страшных болезней:
Их возбудители относятся к 3–4 группам патогенности, поэтому раньше и непригодные вакцины считали медотходами класса Б.
Но представим ситуацию, когда эти отходы попали в природу. Микроорганизмы, пусть даже со сниженной способностью заражать, продолжают жить, размножаться, взаимодействовать друг с другом. Могут появиться новые штаммы известных инфекций, причем куда более опасные и претендующие на 1–2 группы патогенности.
Поэтому с живыми вакцинами решено обращаться как с медицинскими отходами класса В. В частности, их нельзя вывозить необеззараженными.
К какому классу относят прочие вакцины
Если препарат не содержит никаких возбудителей, эпидемиологической опасности он не несет. Тем не менее это химическое вещество, сохраняющее токсическую угрозу. Поэтому все прочие вакцины относят к классу Г и обращаются с ними соответствующим образом.
Обеззараживать их не нужно. В силу отсутствия в составе живых микроорганизмов биологическое оружие из таких препаратов не получится.
